Efecto de seis dietas en el crecimiento y supervivencia de poslarvas de abulón rojo (Haliotis rufescens) y su híbrido (H. rufescens ♀ × H. fulgens ♂)
DOI:
https://doi.org/10.3989/scimar.05300.055Palabras clave:
destete, Haliotis rufescens, Haliotis fulgens, vigor híbrido, Macrocystis pyrifera, diatomea bentónicaResumen
Uno de los principales cuellos de botella en la acuicultura de abulón es el mantenimiento de los individuos durante la fase de destete, cuando la dieta natural cambia de diatomeas (postlarvas) a macroalgas (juveniles). Durante este período, el abulón pasa por profundos cambios morfológicos y fisiológicos, que deben ser sostenidos por una alimentación adecuada. Una dieta inadecuada puede provocar efectos adversos como: metamorfosis tardía, inanición, crecimiento lento e incluso la muerte durante esta fase. Por ello, se han propuesto dos estrategias para aumentar las tasas de crecimiento y supervivencia del abulón durante la fase de destete: (i) ampliar el período de alimentación con diatomeas bentónicas y (ii) la hibridación de abulones mediante cruces interespecíficos. Para determinar la eficacia de ambas estrategias, se evaluaron las tasas de crecimiento y supervivencia de postlarvas de abulón rojo puro (Haliotis rufescens) y de un híbrido obtenido mediante el cruce de hembras de abulón rojo y machos de abulón azul (H. fulgens). A ambos cruces se les suministraron seis dietas diferentes consistentes en una mono dieta de macroalgas (Macrocystis pyrifera, Ulva ohnoi) o en una mezcla con Navicula incerta. En general, con las dietas específicas para cada cruce se obtuvieron mejores tasas de crecimiento, lo que sugiere que cada cruce requiere alimentos (nutrientes) específicos durante el destete. Además, el abulón rojo puro mostró en general las tasas de crecimiento más altas, mientras que en el abulón híbrido se obtuvieron las mayores tasas de supervivencia con la mayoría de las dietas probadas. Por lo que los híbridos parecen soportar mejor las condiciones de estrés, y su uso en la acuicultura podría ayudar a reducir las pérdidas y aumentar su producción comercial.
Descargas
Citas
Alter K., Andrewartha S.J., Morash A.J., et al. 2017. Hybrid abalone are more robust to multi-stressor environments than pure parental species. Aquaculture 478: 25-34. https://doi.org/10.1016/j.aquaculture.2017.04.035
Cai M., Wang Z., Ke C., et al. 2010. Allogyogenetic progeny are produced from a hybrid abalone cross of female Haliotis diversicolor and male Haliotis discus discus. J. Shellfish Res. 29: 725-729. https://doi.org/10.2983/035.029.0325
Carbajal-Miranda M.J., Sánchez-Saavedra M.D.P., Simental J.A. 2005. Effect of monospecific and mixed benthic diatom cultures on the growth of red abalone postlarvae Haliotis rufescens (Swainson 1822). J. Shellfish Res. 24: 401-405. https://doi.org/10.2983/0730-8000(2005)24[401:EOMAMB]2.0.CO;2
Cook P.A. 2014. The Worldwide Abalone Industry. Mod. Econ. 5: 1181-1186. https://doi.org/10.4236/me.2014.513110
Correa-Reyes J.G., Sánchez-Saavedra M. del P., Siqueiros-Beltrones D.A., Flores-Acevedo N. 2001. Isolation and growth of eight strains of benthic diatoms, cultured under two light conditions. J. Shellfish Res. 20: 603-610.
Correa-Reyes J.G., Sánchez-Saavedra M. del P., Viana M.T et al. 2009. Effect of eight benthic diatoms as feed on the growth of red abalone (Haliotis rufescens) postlarvae. J. Appl. Phycol. 21: 387-393. https://doi.org/10.1007/s10811-008-9381-x
Cox K.W. 1962. California Abalones, Family Haliotidae. Fish Bull. 118: 1-131.
Cunningham S.C., Smith A.M., Lamare M.D. 2016. The effects of elevated pCO2 on growth, shell production and metabolism of cultured juvenile abalone, Haliotis iris. Aquac. Res. 47: 2375-2392. https://doi.org/10.1111/are.12684
Daume S. 2006. The roles of bacteria and micro and macro algae in abalone aquaculture: A review. J. Shellfish Res. 25: 151-157. https://doi.org/10.2983/0730-8000(2006)25[151:TROBAM]2.0.CO;2
Daume S., Huchette S., Ryan S., Day R.W. 2004. Nursery culture of Haliotis rubra: the effect of cultured algae and larval density on settlement and juvenile production. Aquaculture 236: 221-239. https://doi.org/10.1016/j.aquaculture.2003.09.035
de Melo C.M.R., Durland E., Langdon C. 2016. Improvements in desirable traits of the Pacific oyster, Crassostrea gigas, as a result of five generations of selection on the West Coast, USA. Aquaculture 460: 105-115. https://doi.org/10.1016/j.aquaculture.2016.04.017
Durazo-Beltrán E., D'Abramo L.R., Toro-Vazquez J.F., et al. 2003. Effect of triacylglycerols in formulated diets on growth and fatty acid composition in tissue of green abalone (Haliotis fulgens). Aquaculture 224: 257-270. https://doi.org/10.1016/S0044-8486(03)00223-0
Durazo-Beltrán E., Viana M.T., D'Abramo L.R., Toro-Vazquez J.F. 2004. Effects of starvation and dietary lipid on the lipid and fatty acid composition of muscle tissue of juvenile green abalone (Haliotis fulgens). Aquaculture 238: 329-341. https://doi.org/10.1016/j.aquaculture.2004.03.025
Dyck M., Roberts R., Jeffs A. 2010. Use of algal diets to aid early weaning in the abalone Haliotis iris. J. Shellfish Res. 29: 613-620. https://doi.org/10.2983/035.029.0309
Edwards M.S. 2019. Comparing the impacts of four ENSO events on giant kelp (Macrocystis pyrifera) in the northeast Pacific Ocean. Algae 34: 141-151. https://doi.org/10.4490/algae.2019.34.5.4
Guillard R.R.L. 1975. Culture of phytoplankton for feeding marine invertebrates. In: Smith W.L. and Chantey M.H. (eds), Cult. Mar. Invertebr. Anim. Plenum Publ. New York 29-60. https://doi.org/10.1007/978-1-4615-8714-9_3
Hamilton M., Kube P., Elliott N., et al. 2009. Development of a breeding strategy for hybrid abalone. Proc. Assoc. Adv. Anim. Breed. Genet. 18: 350-353.
Hernández J., Uriarte I., Viana M.T., et al. 2009. Growth performance of weaning red abalone (Haliotis rufescens) fed with Macrocystis pyrifera plantlets and Porphyra columbina compared with a formulated diet. Aquac. Res. 40: 1694-1702. https://doi.org/10.1111/j.1365-2109.2009.02267.x
Hopkins K.D. 1992. Reporting fish growth: A review of the basics. J. World Aquac. Soc. 23: 173-179. https://doi.org/10.1111/j.1749-7345.1992.tb00766.x
Johnston D., Moltschaniwskyj N., Wells J. 2005. Development of the radula and digestive system of juvenile blacklip abalone (Haliotis rubra): Potential factors responsible for variable weaning success on artificial diets. Aquaculture 250: 341-355. https://doi.org/10.1016/j.aquaculture.2005.03.012
Kawamura T., Saido T., Takami H., Yamashita Y. 1995. Dietary value of benthic diatoms for the growth of post-larval abalone Haliotis discus hannai. J. Exp. Mar. Bio. Ecol. 194: 189-199. https://doi.org/10.1016/0022-0981(95)00099-2
Lafarga-De la Cruz F., Gallardo-Escárate C. 2011. Intraspecies and interspecies hybrids in Haliotis: Natural and experimental evidence and its impact on abalone aquaculture. Rev. Aquac. 3: 74-99. https://doi.org/10.1111/j.1753-5131.2011.01045.x
Li J., Wang M., Fang J., et al. 2018. A comparison of offspring growth and survival among a wild and a selected strain of the Pacific abalone (Haliotis discus hannai) and their hybrids. 495: 721-725. https://doi.org/10.1016/j.aquaculture.2018.06.071
Liang S., Luo X., You W., Luo L., Ke C. 2014. The role of hybridization in improving the immune response and thermal tolerance of abalone. Fish Shellfish Immunol. 39: 69-77. https://doi.org/10.1016/j.fsi.2014.04.014 PMid:24794582
Martínez-Ponce D.R., Searcy-Bernal R. 1998. Grazing rates of red abalone (Haliotis rufescens) postlarvae feeding on the benthic diatom Navicula incerta. J. Shellfish Res. 17: 627-630.
Morales-Bojórquez E., Muciño-Díaz M.O., Vélez-Barajas J.A. 2008. Analysis of the decline of the abalone fishery (Haliotis fulgens and H. corrugata) along the westcentral coast of the Baja California peninsula, Mexico. J. Shellfish Res. 27: 865-870. https://doi.org/10.2983/0730-8000(2008)27[865:AOTDOT]2.0.CO;2
Morse D.E., Duncan H., Hooker N., Morse A. 1977. Hydrogen peroxide induces spawning in mollusks, with activation of prostaglandin endoperoxide synthetase. Science 196: 298-300. https://doi.org/10.1126/science.403609 PMid:403609
Muñoz P., Ambler R., Bulboa C. 2012. Settlement, Survival, and post-larval growth of red abalone, Haliotis rufescens, on polycarbonate plates treated with germlings of Ulva sp. J. World Aquac. Soc. 43: 890-895. https://doi.org/10.1111/j.1749-7345.2012.00615.x
Ortiz J., Uquiche E., Robert P., et al. 2009. Functional and nutritional value of the Chilean seaweeds Codium fragile, Gracilaria chilensis and Macrocystis pyrifera. Eur. J. Lipid Sci. Technol. 111: 320-327. https://doi.org/10.1002/ejlt.200800140
Parker F., Davidson M., Freeman K., et al. 2007. Investigation of optimal temperature and light conditions for three benthic diatoms and their suitability to commercial scale nursery culture of abalone (Haliotis laevigata). J. Shellfish Res. 26: 751-761. https://doi.org/10.2983/0730-8000(2007)26[751:IOOTAL]2.0.CO;2
Revilla-Lovano S., Sandoval-Gil J.M., Zertuche-Gonzalez J.A., et al. 2021. Physiological responses and productivity of the seaweed Ulva ohnoi (Chlorophyta) under changing cultivation conditions in pilot large land-based ponds. Algal Research, 56: 102316. https://doi.org/10.1016/j.algal.2021.102316
Searcy-Bernal R., Pérez-Sánchez E., Anguiano-Beltrán C., Flores-Aguilar R. 2007. Metamorphosis and postlarval growth of abalone Haliotis rufescens in a Mexican commercial hatchery. J. Shellfish Res. 26: 783-787. https://doi.org/10.2983/0730-8000(2007)26[783:MAPGOA]2.0.CO;2
Searcy-Bernal R., Ramade-Villanueva M.R., Altamira B. 2010. Current Status of abalone fisheries and culture in Mexico. J. Shellfish Res. 29: 573-576. https://doi.org/10.2983/035.029.0304
Simental-Trinidad J.A., Sánchez-Saavedra M.P., Correa-Reyes J.G. 2001. Biochemical composition of benthic marine diatoms using as culture medium a common agricultural fertilizer. J. Shellfish Res. 20: 611-617.
Simental J.A., Sanchez-Saavedra M.D., Flores-Acevedo N. 2004. Growth and survival of juvenile red abalone (Haliotis rufescens) fed with macroalgae enriched with a benthic diatom film. J. Shellfish Res. 23: 995-999.
Siqueiros-Beltrones D.A., Domenico V. 2000. Grazing selectivity of red abalone Haliotis rufescens postlarvae on benthic diatom films under culture conditions. J. World Aquac. Soc. 31: 239-246. https://doi.org/10.1111/j.1749-7345.2000.tb00359.x
Strain L.W.S., Borowitzka M.A., Daume S. 2006. Growth and survival of juvenile greenlip abalone (Haliotis laevigata) feeding on germlings of the macroalgae Ulva sp. J. Shellfish Res. 25: 239-247. https://doi.org/10.2983/0730-8000(2006)25[239:GASOJG]2.0.CO;2
Takami H., Kawamura T., Yamashita Y. et al. 2002. Effects of delayed metamorphosis on larval competence, and postlarval survival and growth of abalone Haliotis discus hannai. Aquaculture 213: 311-322. https://doi.org/10.1016/S0044-8486(02)00338-1
Valenzuela-Miranda D., Del Río-Portilla M.A., Gallardo-Escárate C. 2015. Characterization of the growth-related transcriptome in California red abalone (Haliotis rufescens) through RNA-Seq analysis. Mar. Genomics 24: 199-202. https://doi.org/10.1016/j.margen.2015.05.009 PMid:26006295
Viana M.T., López L.M., Salas A. 1993. Diet development for juvenile abalone Haliotis fulgens Evaluation of two artificial diets and macroalgae. Aquaculture 117: 149-156. https://doi.org/10.1016/0044-8486(93)90131-H
Viana M.T., D'Abramo L.R., Gonzalez M.A., et al. 2007. Energy and nutrient utilization of juvenile green abalone (Haliotis fulgens) during starvation. Aquaculture 264: 323-329. https://doi.org/10.1016/j.aquaculture.2007.01.004
Zertuche-González J.A., Sandoval-Gil J.M., Rangel-Mendoza L.K., et al. 2021. Seasonal and interannual production of sea lettuce (Ulva sp.) in outdoor cultures based on commercial size ponds. J. World Aquac. Soc. 52: 1047-1058. https://doi.org/10.1111/jwas.12773
Publicado
Cómo citar
Número
Sección
Licencia
Derechos de autor 2023 Consejo Superior de Investigaciones Científicas (CSIC)

Esta obra está bajo una licencia internacional Creative Commons Atribución 4.0.
© CSIC. Los originales publicados en las ediciones impresa y electrónica de esta Revista son propiedad del Consejo Superior de Investigaciones Científicas, siendo necesario citar la procedencia en cualquier reproducción parcial o total.
Salvo indicación contraria, todos los contenidos de la edición electrónica se distribuyen bajo una licencia de uso y distribución “Creative Commons Reconocimiento 4.0 Internacional ” (CC BY 4.0). Consulte la versión informativa y el texto legal de la licencia. Esta circunstancia ha de hacerse constar expresamente de esta forma cuando sea necesario.
No se autoriza el depósito en repositorios, páginas web personales o similares de cualquier otra versión distinta a la publicada por el editor.
Datos de los fondos
Consejo Nacional de Ciencia y Tecnología
Números de la subvención SEP-CONACYT-CB-2014-238708